Nucleolus Bright Green試劑貨號:N511
核仁熒光染色試劑-綠色
Nucleolus Bright Green
商品信息
儲存條件:避光,在冷暗處保存
運輸條件:室溫
選擇規格:
60 nmol
產品概述
Nucleolus Bright是一種選擇性與RNA結合并產生熒光的小分子熒光染料,只需在固定細胞中加入試劑即可成像。雖然Nucleolus Bright也會和在核仁以外存在的RNA反應,不過核仁作為細胞內RNA最多存在rRNA的產生場所,熒光尤為強烈。
成像時,通過與核染色試劑DAPI[產品貨號:D523]共染色,可以更清楚地確認核仁。有關詳細信息,請參閱使用說明書中的實驗例。
原理
核仁是不帶膜的核內結構體,也是核糖體生物合成的起點。核仁中存在許多核糖體RNA(rRNA),并且是 rRNA基因轉錄以及合成加工的場所。由于蛋白質合成的早期階段在核仁中進行,因此核仁的變化被認為與多種細胞活動有關。核仁的形態變化已被公認為判斷癌癥的指標之一,近年來也有一系列的報道論述了核仁應激與DNA損傷、自噬、病毒感染和細胞衰老的關系,因此核仁在這些方面的研究也受到越來越多的關注。
核仁染色試劑的比較
|
最大激發波長 |
最大發射波長 |
MeOH固定后染色 |
PFA固定后染色 |
活細胞染色 |
Nucleolus Bright Green |
513 nm |
538 nm |
〇 |
〇 |
△※ |
Nucleolus Bright Red |
537 nm |
605 nm |
〇 |
〇 |
△※ |
※希望通過活細胞進行評價時,請咨詢公司技術支持。
產品特點
特點1:清晰地觀察核仁
用4% PFA或MeOH固定HeLa細胞后,用PBS洗凈后用1% Triton X-100進行破膜處理,加入Nucleolus Bright Green或Red和核染色
試劑 (DAPI) 并培養,然后用共聚焦熒光顯微鏡觀察。
結果證實DAPI染色的細胞核內 (藍色)有數個核仁存在。
<染色條件>
?PFA 固定
細胞在4%PFA室溫下浸泡5 min,再用Triton X-100在室溫下浸泡20 min,加入各種熒光探針后培養5 min。
?MeOH 固定
細胞在冷的MeOH中浸泡1 min,再用Triton X-100在室溫下浸泡20 min,加入各種熒光探針后培養5 min。
Nucleolus Bright Green Ex: 488 nm / Em: 500-600 nm
Nucleolus Bright Red Ex: 561 nm / Em: 565-650 nm
DAPI Ex: 405 nm / Em: 450-495 nm
特點2:核仁定位
用4%PFA固定WI-38細胞后,用抗Fibrillarin一抗和熒光標記的二抗免疫染色,并加入Nucleolus Bright Green或Red和核染色試劑
(DAPI) ,培養后,用落射式熒光顯微鏡 (Keyence,BZ-X710) 觀察。
結果證實Nucleolus Bright Green和Nucleolus Bright Red與核仁標記物(Dense Fibrillar Component)的染色部位一致。
<檢測條件>
Nucleolus Bright Green:Ex: 450-490 nm / Em: 500-550 nm
Nucleolus Bright Red:Ex: 533-548 nm / Em: 570-640 nm
DAPI:Ex: 340-380 nm / Em: 435-485 nm
Anti-Fibrillarin 抗體:Ex: 590-650 nm / Em: 668-733 nm
特點:3:與核仁相關的領域的報告示例
相關領域 |
概要 |
文獻 |
評論(衰老) |
關于各種參與細胞功能的核仁,
包括與癌癥和早老癥的已知關系、
特別是關于衰老的核仁功能。 |
V. Tiku, A. Antebi, “Nucleolar Function in Lifespan Regulation.”, Trends Cell Biol., 2018, 28(8), 662. |
細胞衰老 |
由于與抑制衰老有關的蛋白質缺損、
核仁數量的減少和核仁總面積的加。 |
H. Tanaka, S. Takebayashi, A. Sakamoto, T. Igata, Y. Nakatsu, N. Saitoh, S. Hino, M. Nakao, “The SETD8/PR-Set7 Methyltransferase Functions as a Barrier to Prevent Senescence-Associated Metabolic Remodeling.”, Cell Rep.,2017, 18(9), 2148. |
細胞衰老 |
由于rRNA加工因子的枯竭導致
核仁肥大化,
同時SA-βGal和p16表達增加。 |
K. Nishimura, T. Kumazawa, T. Kuroda, N. Katagiri, M. Tsuchiya, N. Goto, R. Furumai, A. Murayama, J. Yanagisawa, K. Kimura, “Perturbation of ribosome biogenesis drives cells into senescence through 5S RNP-mediated p53 activation.”, Cell Rep., 2015, 10(8), 1310. |
自噬 |
通過抑制RNA聚合酶的轉錄,
確認自噬的誘導和核仁的形狀變化。 |
N. Katagiri, T. Kuroda, H. Kishimoto, Y. Hayashi, T. Kumazawa and K. Kimura, “The nucleolar protein nucleophosmin is essential for autophagy induced by inhibiting Pol I transcription”, Scientific Reports, 2015, 8903, DOI: 10.1038/srep08903. |
衰老細胞的評價例
將不同傳代數的WI-38細胞用4% PFA固定后,用PBS洗凈并用1% Triton X-100進行破膜處理,然后加入Nucleolus Bright Green或
Red和核染色試劑 (DAPI),培養后用共聚焦熒光顯微鏡觀察。
結果證實第3代細胞 (P3) 中的一個細胞核內存在多個核仁,而第18代細胞 (P18) 中核仁變大并成為一體。
<染色條件>
細胞在4% PFA室溫下浸泡5 min,再用Triton X-100在室溫下浸泡20 min,加入各種熒光探針后培養5 min。
<檢測條件>
Nucleolus Bright Green Ex: 488 nm / Em: 500-600 nm
Nucleolus Bright Red Ex: 561 nm / Em: 565-650 nm
DAPI Ex: 405 nm / Em: 450-495 nm
產品實驗例
實驗例:通過共聚焦定量細胞成像儀進行定量分析
使用共聚焦定量細胞成像儀 (橫河電機株式會社 CQ1)對衰老細胞的定量分析。
將傳代數不同的WI-38細胞固定后,分別用Nucleolus Bright Green和DAPI染色核仁,并用共聚焦定量細胞成像儀進行定量分析
通過圖像對核仁進行分析
用共聚焦定量細胞成像儀在405nm處拍攝細胞核圖像,在488nm處拍攝核仁體像,通過分析軟件Cell Pathfinder識別各個細胞核內的核仁,并計算出其數量。
橫河電機CQ1拍攝條件
使用板:96孔板
物鏡:40倍
激發波長:
405nm(DAPI):藍色
488nm(Nucleolus Bright Green):綠色
視野:16視野
<解析圖像>
藍框線:核
紅框線:核仁
核仁數分析
在傳代數較多的細胞中,得到了一個細胞核中只有一個核仁的比例增加,而兩個及以上核仁的比例減少的結果。該結果與下述論文中衰老的WI-38細胞中核仁數的減少(論文中的Table3)*1,以及通過SETD8敲低誘導衰老的細胞核仁的變化(論文中的Figure4D)*2得到了相同的結果。
*1 P. M. Bemiller, L. Lee, “Nucleolar changes in senescing WI-38 cells”, Mech. Ageing Dev., 1978, 8 , 417.
*2 H. Tanaka, S. Takebayashi, A. Sakamoto, T. Igata, Y. Nakatsu, N. Saitoh, S. Hino, M. Nakao, “The SETD8/PR-Set7 Methyltransferase Functions as a Barrier to Prevent Senescence-Associated Metabolic Remodeling.”, Cell Rep., 2017, 18(9), 2148.
熒光特性
常見問題Q&A
Q1:可以染色活細胞嗎? |
A1:本試劑建議用于固定細胞染色,不建議用活細胞染色。如果您想用活細胞染色,請聯系我們的技術支持。 |
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